[Bone marrow fibrosis in primary myelofibrosis in relation to myelodysplasia- and age-related mutations of hematopoietic cells].
Knochenmarkfibrose bei primärer Myelofibrose in Abhängigkeit von myelodysplasie- und altersassoziierten Mutationen der Hämatopoese.
Age-related clonal hematopoiesis
Hematopoietic mutations
Myelodysplasia
Primary myelofibrosis
Risk of fibrotic progression
Journal
Der Pathologe
ISSN: 1432-1963
Titre abrégé: Pathologe
Pays: Germany
ID NLM: 8006541
Informations de publication
Date de publication:
Dec 2020
Dec 2020
Historique:
pubmed:
29
10
2020
medline:
28
1
2021
entrez:
28
10
2020
Statut:
ppublish
Résumé
Besides histopathological findings, there are no indicators of increased risk for fibrotic progression in myeloproliferative neoplasms (MPNs). Age-related clonal hematopoiesis (ARCH) or clonal hematopoiesis of indetermined potential (CHIP) are frequent findings in the elderly and combinations with MPN driver mutations (JAK2, MPL, and CALR) have been described. To determine the impact of ARCH/CHIP-related mutations for the development of fibrosis in primary myelofibrosis (PMF), the mutational status of cases with fibrotic progression from grade 0 to grade 2/3 (n = 77) as evidenced by follow-up bone marrow biopsies (median 6.2 years) was compared to prefibrotic PMF samples without the development of fibrosis (n = 27; median follow-up 7.3 years). Frequent ARCH/CHIP-associated mutations (TET2, ASXL1, DNMT3A) demonstrable at presentation were not connected with fibrotic progression. However, mutations that are rarely found in ARCH/CHIP (SRSF2, U2AF1, SF3B1, IDH1/2, and EZH2) were present in 24.7% of cases with later development of fibrosis and not detectable in cases staying free from fibrosis (P = 0.0028). Determination of tumor mutational burden (TMB) in a subgroup of cases (n = 32) did not show significant differences (7.68 mutations/MB vs. 6.85 mutations/MB). We conclude that mutations rarely found in ARCH/CHIP provide an independent risk factor for rapid fibrotic progression (median 2.0 years) when already manifest at first presentation. Abgesehen von histopathologischen, allerdings eingeschränkt reproduzierbaren Merkmalen sind keine Kriterien bekannt, die die Entwicklung einer Myelofibrose (MF) als typische Komplikation myeloproliferativer Neoplasien (MPN; chronische myeloproliferative Erkrankungen nach alter Nomenklatur) in frühen noch unverfaserten Stadien vorhersagen. Altersassoziierte klonale Hämatopoese („age-related clonal hematopoiesis“, ARCH, oder „clonal hematopoiesis of indetermined potential“, CHIP) wird ab dem 65. Lebensjahr in bis zu 10 % dieser Alterskohorte angetroffen. ARCH wurde kombiniert mit typischen Treibermutationen (JAK2, MPL und CALR) bei MPN beschrieben. Um die Auswirkung von ARCH auf das Fibroserisiko von primärer Myelofibrose (PMF) im unverfaserten Frühstadium (MF 0) zu ermitteln, wurden in dieser Studie 77 Fälle von früher PMF mit späterer Entwicklung einer Myelofibrose (MF 2 und 3) im Verlauf (Median 6,2 Jahre) hinsichtlich ihres Mutationsstatus untersucht. Als Vergleichskollektiv dienten PMF-Fälle (n = 27) ohne Entwicklung einer Myelofibrose mit einer medianen Beobachtungszeit von 7,2 Jahren. Die häufigsten ARCH-Mutationen, die Gene TET2, ASXL1 und DNMT3A betreffend, zeigten dabei keine Korrelation mit dem fibrotischen Progress, wenn sie bereits in der initialen Biopsie bestanden. Andere, eher beim myelodysplastischen Syndrom (MDS) und nicht bei ARCH anzutreffende Mutationen der Hämatopoese wie SRSF2, U2AF1, SF3B1, IDH1/2 und EZH2 fanden sich bei 24,7 % der präfibrotischen PMF-Fälle mit späterem fibrotischen Progress, aber in keinem der präfibrotischen PMF-Fälle ohne Fibroseentwicklung (p = 0,0028). Aus diesen Befunden ergibt sich, dass die häufigen ARCH/CHIP-Mutationen TET2, ASXL1 und DNMT3A kein gesteigertes Fibroserisiko bei PMF im unverfaserten Frühstadium bewirken, während die MDS- und Nicht-ARCH-assoziierten Mutationen SRSF2, U2AF1, SF3B1, IDH1/2 und EZH2 einen signifikanten Risikofaktor für den schnellen Progress in eine MF (Median 2 Jahre) darstellen.
Autres résumés
Type: Publisher
(ger)
Abgesehen von histopathologischen, allerdings eingeschränkt reproduzierbaren Merkmalen sind keine Kriterien bekannt, die die Entwicklung einer Myelofibrose (MF) als typische Komplikation myeloproliferativer Neoplasien (MPN; chronische myeloproliferative Erkrankungen nach alter Nomenklatur) in frühen noch unverfaserten Stadien vorhersagen. Altersassoziierte klonale Hämatopoese („age-related clonal hematopoiesis“, ARCH, oder „clonal hematopoiesis of indetermined potential“, CHIP) wird ab dem 65. Lebensjahr in bis zu 10 % dieser Alterskohorte angetroffen. ARCH wurde kombiniert mit typischen Treibermutationen (JAK2, MPL und CALR) bei MPN beschrieben. Um die Auswirkung von ARCH auf das Fibroserisiko von primärer Myelofibrose (PMF) im unverfaserten Frühstadium (MF 0) zu ermitteln, wurden in dieser Studie 77 Fälle von früher PMF mit späterer Entwicklung einer Myelofibrose (MF 2 und 3) im Verlauf (Median 6,2 Jahre) hinsichtlich ihres Mutationsstatus untersucht. Als Vergleichskollektiv dienten PMF-Fälle (n = 27) ohne Entwicklung einer Myelofibrose mit einer medianen Beobachtungszeit von 7,2 Jahren. Die häufigsten ARCH-Mutationen, die Gene TET2, ASXL1 und DNMT3A betreffend, zeigten dabei keine Korrelation mit dem fibrotischen Progress, wenn sie bereits in der initialen Biopsie bestanden. Andere, eher beim myelodysplastischen Syndrom (MDS) und nicht bei ARCH anzutreffende Mutationen der Hämatopoese wie SRSF2, U2AF1, SF3B1, IDH1/2 und EZH2 fanden sich bei 24,7 % der präfibrotischen PMF-Fälle mit späterem fibrotischen Progress, aber in keinem der präfibrotischen PMF-Fälle ohne Fibroseentwicklung (p = 0,0028). Aus diesen Befunden ergibt sich, dass die häufigen ARCH/CHIP-Mutationen TET2, ASXL1 und DNMT3A kein gesteigertes Fibroserisiko bei PMF im unverfaserten Frühstadium bewirken, während die MDS- und Nicht-ARCH-assoziierten Mutationen SRSF2, U2AF1, SF3B1, IDH1/2 und EZH2 einen signifikanten Risikofaktor für den schnellen Progress in eine MF (Median 2 Jahre) darstellen.
Identifiants
pubmed: 33113046
doi: 10.1007/s00292-020-00828-2
pii: 10.1007/s00292-020-00828-2
doi:
Substances chimiques
Janus Kinase 2
EC 2.7.10.2
Types de publication
Journal Article
Review
Langues
ger
Sous-ensembles de citation
IM
Pagination
124-128Références
Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, Thiele J, Borowitz MJ, Le Beau MM, Bloomfield CD, Cazzola M, Vardiman JW (2016) The 2016 revision to the world health organization classification of myeloid neoplasms and acute leukemia. Blood 127:2391–2405
doi: 10.1182/blood-2016-03-643544
Bartels S, Faisal M, Büsche G, Schlue J, Hasemeier B, Schipper E, Vogtmann J, Westphal L, Lehmann U, Kreipe H (2020) Mutations associated with age-related clonal hematopoiesis in PMF patients with rapid progression to myelofibrosis. Leukemia 34:1364–1372
doi: 10.1038/s41375-019-0668-5
Bartels S, Faisal M, Büsche G, Schlue J, Kreipe H, Lehmann U (2018) Fibrotic progression in polycythemia vera is associated with early concomitant driver-mutations besides JAK2. Leukemia 32:556–558
doi: 10.1038/leu.2017.298
Buhr T, Busche G, Choritz H, Langer F, Kreipe H (2003) Evolution of myelofibrosis in chronic idiopathic myelofibrosis as evidenced in sequential bone marrow biopsy specimens. Am J Clin Pathol 119:152–158
doi: 10.1309/PTVGB3DXB8A8M7KD
Buhr T, Hebeda K, Kaloutsi V, Porwit A, Van der Walt J, Kreipe H (2012) European bone marrow working group trial on reproducibility of world health organization criteria to discriminate essential thrombocythemia from prefibrotic primary myelofibrosis. Haematologica 97(3):360–365. https://doi.org/10.3324/haematol.2011.047811
doi: 10.3324/haematol.2011.047811
pubmed: 22058215
pmcid: 3291589
Burkhardt R, Bartl R, Jäger K, Frisch B, Kettner G, Mahl G, Sund M (1986) Working classification of chronic myeloproliferative disorders based on histological, haematological, and clinical findings. J Clin Pathol 39(3):237–252
doi: 10.1136/jcp.39.3.237
Campbell PJ, Bareford D, Erber WN, Wilkins BS, Wright P, Buck G, Wheatley K, Harrison CN, Green AR (2009) Reticulin accumulation in essential thrombocythemia: prognostic significance and relationship to therapy. J Clin Oncol 27:2991–2999
doi: 10.1200/JCO.2008.20.3174
Carbuccia N, Murati A, Trouplin V et al (2009) Mutations of ASXL1 gene in myeloproliferative neoplasms. Leukemia 23:2183–2186
doi: 10.1038/leu.2009.141
Dameshek W (1951) Some speculations on the myeloproliferative syndromes. Blood 6:372–375
doi: 10.1182/blood.V6.4.372.372
Georgii A, Buhr T, Buesche G, Kreft A, Choritz H (1996) Classification and staging of Ph-negative myeloproliferative disorders by histopathology from bone marrow biopsies. Leuk Lymphoma 22(1):15–29
doi: 10.3109/10428199609074357
Gibson CJ, Steensma DP (2018) New insights from studies of clonal hematopoiesis. Clin Cancer Res 24:4633–4642
doi: 10.1158/1078-0432.CCR-17-3044
Jaiswal S, Ebert BL (2019) Clonal hematopoiesis in human aging and disease. Science 366:eaan4673
doi: 10.1126/science.aan4673
James C, Ugo V, Le Couédic JP, Staerk J, Delhommeau F, Lacout C, Garçon L, Raslova H, Berger R, Bennaceur-Griscelli A, Villeval JL, Constantinescu SN, Casadevall N, Vainchenker W (2005) A unique clonal JAK2 mutation leading to constitutive signalling causes polycythaemia vera. Nature 434:1144–1148
doi: 10.1038/nature03546
Klampfl T, Gisslinger H, Harutyunyan AS et al (2013) Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med 369:2379–2390
doi: 10.1056/NEJMoa1311347
Kreipe H (2018) Neoplastische Bildungsstörungen der Hämatopoese mit erhaltener Ausreifung. In: Müller-Hermelink HK, Kreipe HH (Hrsg) Knochenmark, Lymphatisches System, Milz, Thymus. Springer, Berlin, S 47–88
Kvasnicka HM, Thiele J (2006) The impact of clinicopathological studies on staging and survival in essential thrombocythemia, chronic idiopathic myelofibrosis, and polycythemia rubra vera. Semin Thromb Hemost 32:362–371
doi: 10.1055/s-2006-942757
Latagliata R et al (2018) Comparison of JAK2
doi: 10.1002/hon.2430
Lehmann U, Bartels S, Hasemeier B, Geffers R, Schlue J, Büsche G, Hussein K, Kreipe H (2013) SRSF2 mutation is present in the hypercellular and prefibrotic stage of primary myelofibrosis. Blood 121:4011–4012
doi: 10.1182/blood-2012-11-467662
Link DC, Walter MJ (2016) ‘CHIP’ping away at clonal hematopoiesis. Leukemia 30:1633–1635
doi: 10.1038/leu.2016.130
Ortmann CA, Kent DG, Nangalia J, Silber Y, Wedge DC, Grinfeld J, Baxter EJ, Massie CE, Papaemmanuil E, Menon S, Godfrey AL, Dimitropoulou D, Guglielmelli P, Bellosillo B, Besses C, Döhner K, Harrison CN, Vassiliou GS, Vannucchi A, Campbell PJ, Green AR (2015) Effect of mutation order on myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med 372:601–612
doi: 10.1056/NEJMoa1412098
Raskind WH, Steinmann L, Najfeld V (1998) Clonal development of myeloproliferative disorders: clues to hematopoietic differentiation and multistep pathogenesis of cancer. Leukemia 12:108–116
doi: 10.1038/sj.leu.2400934
Tefferi A, Finke CM, Lasho TL et al (2014) U2AF1 mutations in primary myelofibrosis are strongly associated with anemia and thrombocytopenia despite clustering with JAK2V617F and normal karyotype. Leukemia 28:431–433
doi: 10.1038/leu.2013.286
Tefferi A (2016) Myeloproliferative neoplasms: a decade of discoveries and treatment advances. Am J Hematol 91:50–58. https://doi.org/10.1002/ajh.24221
doi: 10.1002/ajh.24221
pubmed: 26492355
Thiele J, Kvasnicka HM, Tefferi A, Barosi G, Orazi A, Vardiman JW (2008) Primary myelofibrosis. In: Swerdlow SH, Campo E, Lee Harris N, Jaffe ES, Pileri SA, Stein H, Thiele J, Vardiman JW (Hrsg) WHO classification of haematopoietic and lymphoid tissues. IARC Press, Lyon, S 44–47